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    分子克隆实验的流程及注意事项--一、酶切连接

    发布时间: 2025-03-17  点击次数: 304次

    一、酶切连接
    一般来说,限制性内切酶的选择非常重要。建议从以下方面判断选择:
    1.限制性内切酶的识别序列在目的载体中存在且只有一个,在目的片段中不存在;
    2.尽量选择酶切产物为粘性末端、酶切效率高的限制性内切酶,如BamH I、Hind III 等;
    3.双酶切时,注意缓冲液对两种内切酶的活性影响,可根据具体活性相应调整酶量和反应时间;若缓冲液不能同时满足两种酶的要求,需要分步酶切;
    4.单酶切时,建议对线性化载体进行去磷酸化操作,减少载体自身环化的出现。
    注: 酶 切 后, 为 防 止 载 体 自 连 , 尤 其 当 酶 切 后 产 物 末 端 可 互 补 或 是 平 端 时 ( 产 物 末 端 的 磷 酸 基团 和 羟 基 基 团 可 连 接 成 为 酯 键 导 致 自 连 发 生 ), 有必要进行载体的去磷酸化 。在载体去磷酸化过程中,碱性磷酸酶可去除载体末端的5’磷酸基团 。


    引物设计与PCR扩增

    1.完成目的片段 PCR 扩增引物设计后,根据载体线性化使用的限制性内切酶,分别在上下游引物的 5’端引入对应内切酶的酶切位点与保护碱基;

    2.建议使用高保真酶进行目的片段的 PCR 扩增,并摸索退火温度,优化反应体系和程序。


    PCR / 酶切产物的纯化回收

    PCR/ 酶切反应后,产物应当进行琼脂糖凝胶电泳鉴定,判断是否存在目的大小的条带;
    2.推荐使用切胶回收的方式纯化回收 ( 切胶时间最好控制在 3min 内,避免紫外照射对 DNA 的损伤 ),回收浓度使用 NanoDrop/OneDrop 等仪器检测,并跑胶鉴定是否仅存在目的条带;
    3.回收浓度低时,可通过增加 PCR/ 酶切反应体系,采取多管反应单管回收的方式,提高回收产物的浓度;
    4.PCR 产物应当在完成切胶回收操作后,再进行酶切反应及后续的纯化回收。


    目的片段与载体的连接

    利用 T4 DNA 连接酶完成酶切后载体与片段的连接重组。
    1. 连接体系中使用的线性化载体与目的片段摩尔比可在 1:1 ~ 1:10 之间调整,一般最适比例为 1:3;
    2. 平末端载体与 DNA 片段连接时,应首先将载体进行去磷酸化操作,减少载体自身环化的出现;
    3. 连接体系各组分投入体积≥ 1μl,浓度过高时可稀释后使用。


    感受态转化涂板
    1.连接产物转化的感受态细胞建议使用克隆用化学感受态细胞,不建议使用表达用感受态细胞;
    注:DH5α、Fast-T1 适合≤ 15kb 质粒转化;XL10 适合 >10kb 质粒转化
    2.重组产物体积与感受态细胞体积的比例为 1:10,推荐 10μl 重组产物加入至 100μl 感受态细胞或 5μl 重组产物加入至 50μl 感受态细胞;
    3.热激时间:按照感受态细胞说明书操作进行;
    4.平板抗生素抗性:平板使用抗性与转化的载体抗性需保持一致;
    5.菌液涂板体积:将菌液离心(2500×g、3min),移液枪吸取丢弃多余 LB 培养基,保留
    100μl 重悬后全部涂板;或吸取合适体积涂板。


    单克隆菌落PCR鉴定

    1.挑取平板中体积大小适中的单克隆菌落,避免选择过大或过小的单克隆菌落;

    2.挑取数个单克隆菌落进行鉴定分析;
    3. 挑取的菌落放入已添加 10μl ddH2O 的 1.5ml 或 2ml EP 管中溶解混匀后,吸取 1-2μl 作为
    PCR 反应(10/20μl 体系)模板;
    4. 推荐使用一对分别位于片段和载体的上下游引物进行 PCR 鉴定。


    常见问题分析

    未酶切或部分酶切

    1. 限制性内切酶失活:建议使用新酶;

    2. 反应体系与程序非最佳化:按照说明书建议操作;

    3. 限制性内切酶浓度过低:建议增加酶使用量;

    4. DNA 模板过多:按照说明书建议操作;

    5. 体系存在抑制剂:对照组操作验证;

    6. 识别位点错误:测序验证序列信息;

    7. DNA 可能形成超螺旋结构:增加酶量;

    8. 识别位点过于接近 DNA 末端:末端添加保护碱基。



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